Laboratorium weterynaryjne Lab-Wet dysponuje własną flotą kurierską!
O LABORATORIUM WETERYNARYJNYM
Laboratorium weterynaryjne LAB-WET Weterynaryjne Laboratorium Diagnostyczne Spółka Cywilna jest prywatną firmą i jest wpisana do rejestru weterynaryjnych zakładów leczniczych dla zwierząt.
Laboratorium istnieje od 1997 roku i posiada siedzibę przy ulicy Wita Stwosza 30 w Warszawie. W 2011 roku powstał nowy oddział w Krakowie przy ulicy Zakopiańskiej 270, natomiast od 1 października 2013 roku rozpoczął działalność nowy oddział w Gdańsku przy ulicy Warszawskiej 40.
Od 11 sierpnia 2014 roku rozpoczął działalność nowy oddział laboratorium weterynaryjne we Wrocławiu przy ulicy gen Stefana Grota-Roweckiego 114.
Od 19 października 2016 roku rozpoczął działalność nowy oddział Poznań – Dąbrowa przy ul. Bukowskiej 70. Od 15 grudnia 2020 roku rozpoczął działalność nowy oddział w Szczecinie przy ulicy Koralowej 105.
Od 4 sierpnia 2021 roku rozpoczął działalność nowy oddział w Łodzi przy ulicy Leszczynowej 4b Posiadamy procedury kontroli jakości wewnątrzlaboratoryjnej oraz bierzemy udział w sprawdzianach hematologicznych i biochemicznych Centralnego Ośrodka Badań Jakości w Diagnostyce Laboratoryjnej (Łódź).
Laboratoriów w całej Polsce
lat doświadczenia
Sprawdź naszą ofertę badań naszego laboratorium weterynaryjnego!
Aktualności
Rozszerzamy ofertę badań parazytologicznych.
Informujemy, że nasza oferta została rozszerzona o nowe badania parazytologiczne: Badanie ogólne kału + strawność - badanie określające parametry fizyko-chemiczne kału oraz strawność Sedymentacja - pozwala na wykrycie jaj oraz larw, które są za ciężkie lub zbyt...
Pakiety badań weterynaryjnych
pakiety weterynaryjne INFORMACJA Wychodząc na przeciw Państwa oczekiwaniom stworzyliśmy Pakiety Weterynaryjne.Pierwszy z nich to PW1 Pakiet Profilaktyczny w skład którego wchodzą:Profil diagnostyczny rozszerzony: morfologia z rozmazem manualnym, oznaczenia...
Badania metodą Real-Time PCR
Badania metodą Real-Time PCR INFORMACJA Informujemy, że od 1 marca 2018 roku wykonujemy w naszym laboratorium weterynaryjnym badania metodą Real-Time PCR. Jednym z wielu zastosowań metody jest szybkie i ilościowe wykrywanie nawet małych ilości patogenu (bakterii,...
Pobieranie
materiału
Naczelna zasada:
badanie materiału pochodzącego od zwierząt powinno być wykonywane w laboratorium weterynaryjnym ponieważ:
- Tylko laboratoria weterynaryjne: stosują metody sprawdzone na materiale zwierzęcym.
- Zatrudniają weterynaryjnych diagnostów laboratoryjnych znających specyfikę materiału pochodzącego od zwierząt, dlatego posiadających wiedzę ułatwiająca wybór
najlepszych wskaźników zmian w poszczególnych narządach u różnych gatunków zwierząt.
- Nasze laboratorium weterynaryjne posiada aparaturę umożliwiającą zmianę zakresu pomiaru w zależności od cech materiału badanego zwierzęcia, a co najważniejsze także wartości referencyjne, uwzględniające rasę i wiek różnych gatunków zwierząt.
Jak prawidłowo pobrać mocz ?
- Do plastikowego sterylnego pojemnika jednorazowego użytku.
- W ilości ok. 40 ml umożliwiającej dokładne wykonanie wszystkich oznaczeń.
- Z pierwszej porannej mikcji, gwarantującej porównanie do wartości referencyjnych.
- Najlepiej środkowy strumień.
Jak prawidłowo pobrać krew ?
Przygotowanie pacjenta:
- W dniu poprzedzającym unikać podawania nadmiaru wody i nietypowego pożywienia.
- Nie pobierać krwi od zwierząt zmęczonych i silnie przestraszonych, ponieważ wynik może być niemiarodajny.
- Pobierać krew na czczo, minimum 6 godzin od ostatniego karmienia oraz przed podaniem jakichkolwiek leków.
- Przed badaniem profilu lipidowego zachować stałą dietę przez 2 tyg. oraz odstęp 14 godz. od ostatniego posiłku.
- Przed badaniem krwi utajonej w kale stosować dietę bezmięsną przez 3 dni.
Krew żylną do badania morfologicznego (minimum 20 ul) należy pobrać:
- Odrzucając pierwsze krople.
- Do probówki z EDTA-K2/K3 (fioletowy korek) o pojemności 1 lub 2 ml.
- Do kreski zaznaczonej przez producenta na probówce, nie więcej – bo powstaną skrzepy oraz nie mniej – bo nadmiar antykoagulantu uszkodzi krwinki.
- Delikatnie przelewać ze strzykawki do probówki, ponieważ w przeciwnym razie może spowodować to hemolize.
- Po zakorkowaniu zawartość wymieszać bardzo starannie, ale delikatnie – aby nie spowodować hemolizy.
- Pozostawić probówkę w niskiej temperaturze pokojowej.
- Zawiadomić laboratorium weterynaryjne o konieczności odbioru próbki w czasie nie przekraczającym 2 godzin.
- Próbka transportowana dłużej powinna być przechowywana w lodówce.
- Do badania morfologicznego można także pobrać krew włośniczkową, ale jest ona bardziej rozrzedzona.
Krew do badania OB:
Przygotowanie pacjenta:
- Powinna być pobrana do probówki o pojemności 1 lub 2 ml na 3,2% cytrynian sodowy (czarny korek).
- Dopuszczane jest pobranie do probówki z EDTA-K2/K3 (razem z morfologią).
- Do badania OB potrzebne jest minimum 1 ml krwi.
Krew do oznaczeń biochemicznych należy pobrać ”na skrzep”:
- Do czystej, suchej probówki (czerwony korek), nie mieszać oraz ustawić w pionie.
- Delikatnie przelewać ze strzykawki do probówki, by nie spowodować hemolizy
- Po powstaniu skrzepu (ok. 15 min.) wstawić do lodówki.
- Do każdego badania biochemicznego potrzebna jest inna ilość surowicy: od 10 do 50 ul, stąd z 1 ml krwi po uzyskaniu maximum 300 ?
l surowicy można wykonać 6 różnych oznaczeń
- Do badania glukozy krew powinna być pobierana na EDTA-K2 z fluorkiem sodowym (szary korek)
- Krew ”na skrzep” do oznaczenia stężenia bilirubiny należy chronić przed światłemKrew do niektórych oznaczeń biochemicznych wykonywanych w osoczu wersenianowym należy pobrać tak, jak do badania morfologicznego (EDTA-K2/K3)
Krew do oznaczeń koagulogramu
- Do probówki z 1,7% cytrynianu sodowego (niebieski korek)
- Nie stosować opaski uciskowej
Jak prawidłowo pobrać płyn z jamy ciała oraz płyn mózgowo-rdzeniowy ?
- Jedna probówka: tak jak do badania biochemicznego (”na skrzep”)
- Zawiadomić laboratorium o konieczności odbioru próbki w czasie nie przekraczającym 2 godzin
- Próbka transportowana dłużej powinna być przechowywana w temp. +4C.
Jak prawidłowo pobrać wymaz do badania bakteriologicznego?
- Przed rozpoczęciem antybiotykoterapii lub 7 dni po jej zakończeniu
- Materiał ze zmian pobrać do wymazówki z podłożem transportowym i przekazać do badania.
Jak prawidłowo pobrać materiał do badania mykologicznego?
- Wyrwać kilkanaście włosów wraz z cebulkami z obrzeża zmian i/lub
- Zeskrobać, np. skalpelem naskórek bez naruszania ciągłości skóry
- Materiał (wraz ze skalpelem) umieścić w jałowym, zamykanym pojemniku
Jak prawidłowo pobrać kał do badania parazytologicznego?
- Kał należy pobrać przed rozpoczęciem leczenia
- Zebrać z kilku miejsc oddanego kału do sterylnego pojemnika jednorazowego użytku
- Pobierać trzykrotnie, najlepiej co drugi dzień
- Próbki przechowywać w lodówce w szczelnym pojemniku
Jak prawidłowo pobrać materiał do badania histopatologicznego?
- Ze zmienionych nowotworowo bardzo dużych części tkanki należy pobrać jej niewielkie fragmenty z kilku miejsc, najlepiej z tkanką otaczającą
- Niewielkie zmienione tkanki należy pobrać w całości wraz z tkanką otaczającą
- Bardzo małe fragmenty tkanki należy rozłożyć na bibułce i wraz z nią umieścić w formalinie
- Pobrany materiał umieścić w pojemniku z 4% formaliną (1cz. 37% paraformaldehydu + 9 cz. wody) i pozostawić na maximum 48 godzin w temp. pokojowej.
Nie chłodzić!
- Objętość formaliny powinna być 20-krotnie większa od objętości wycinka
- Przy podejrzeniu zmian nowotworowych rozpoznawanych metodami immuno-histochemicznymi próbkę w formalinie można przechowywać tylko 24 godziny
- Materiał z biopsji cienko igłowej należy rozmazać na szkiełku podstawowym, wysuszyć i ew. pokryć preparatem Cytofix, zabezpieczając końce szkiełka przed sklejeniem przy pomocy plastra. Nie przechowywać!
- Materiał z biopsji grubo igłowej traktować jak mały fragment tkanki, rozłożyć na bibułce i umieścić w formalinie
- W razie wątpliwości skontaktować się z laboratorium
Jak opisać próbkę ?
Naklejka na pojemniku lub probówce winna zawierać
- imię i nazwisko właściciela
- gatunek, rasa, wiek zwierzęciaSkierowanie do laboratorium
- imię i nazwisko właściciela
- gatunek, rasa, płeć, kastracja i wiek zwierzęcia
- data i godzina pobrania materiału
- pieczątka lecznicy i lekarza
- informacja o próbce: rodzaj materiału i antykoagulantu
- zlecenie
- uwagi: rozpoznanie i informacja o stosowanym leczeniu
Pobierz skierowanie
Laboratorium weterynaryjne Lab-Wet współpracuje z:
Kontakt
Dane do przelewu
WETERYNARYJNE LABORATORIUM DIAGNOSTYCZNE LAB-WET
02-661 WARSZAWA
UL. WITA STWOSZA 30
Numer konta bankowego:
42 1020 1127 0000 1602 0087 1954
Warszawa
Laboratorium Weterynaryjne:
ul. Wita Stwosza 30, 02-661 Warszawa
Laboratorium czynne całodobowo
Tel. 22 852-45-25
Fax. 22 852-45-20
Kurier zlecenia: 501-782-940
e-mail: biuro@labwet.pl
Dział wysyłkowy
Tel./Fax 22 852-61-36
e-mail: labwet@labwet.pl
Kraków
30-435 Kraków
Laboratorium czynne:
Poniedziałek – Piątek 10.00 – 20.00
Sobota 10.00 – 15.00
Niedziela nieczynne
Tel./fax 12 256-32-76
Kurier zlecenia: 501-077-911
e-mail: krakow@labwet.pl
Gdańsk oraz Bydgoszcz i Toruń
80-180 Gdańsk
Laboratorium czynne:
Poniedziałek – Piątek 10.00 – 20.00
Sobota 10.00 – 15.00
Niedziela nieczynne
Tel./fax 58 301-90-41
Kurier zlecenia: 501-274-874
e-mail: gdansk@labwet.pl
Poznań/Dąbrowa
62-070 Dąbrowa
Laboratorium czynne:
Poniedziałek – Piątek 10.00 – 20.00
Sobota 10.00 – 15.00
Niedziela nieczynne
Tel./fax 61-679-22-88
Kurier zlecenia: 503-771-377
e-mail: poznan@labwet.pl
Szczecin i okolice
Laboratorium czynne:
Poniedziałek – Piątek 10.00 – 20.00
Sobota 10.00 – 15.00
Niedziela nieczynne
Tel./fax 91 817 11 59
Kurier zlecenia: 501 631 408
e-mail: szczecin@labwet.pl
Łódź i okolice
91-486 Łódź
Laboratorium czynne:
Poniedziałek – Piątek 10.00 – 20.00
Sobota 10.00 – 15.00
Niedziela nieczynne
Tel./fax 42-616-04-84
Kurier zlecenia: 501-18-2222
e-mail: lodz@labwet.pl