Polska Sieć Laboratoriów Weterynaryjnych

LAB-WET

Nasze placówki

Warszawa

ul. Wita Stwosza 30

Kraków

ul. Zakopiańska 270

Poznań

ul. Bukowska 70

Gdańsk

ul. Warszawska 40

Szczecin

ul. Koralowa 105 71-220 Szczecin

Łódź

ul. Leszczynowa 4b 91-489 Łódź

Wrocław

ul. gen. Stefana Grota-Roweckiego 114

laboratorium weterynaryjneLaboratorium weterynaryjne Lab-Wet dysponuje własną flotą kurierską!

O LABORATORIUM WETERYNARYJNYM

Laboratorium weterynaryjne LAB-WET Weterynaryjne Laboratorium Diagnostyczne Spółka Cywilna jest prywatną firmą i jest wpisana do rejestru weterynaryjnych zakładów leczniczych dla zwierząt.

Laboratorium istnieje od 1997 roku i posiada siedzibę przy ulicy Wita Stwosza 30 w Warszawie. W 2011 roku powstał nowy oddział w Krakowie przy ulicy Zakopiańskiej 270, natomiast od 1 października 2013 roku rozpoczął działalność nowy oddział w Gdańsku przy ulicy Warszawskiej 40.

Od 11 sierpnia 2014 roku rozpoczął działalność nowy oddział laboratorium weterynaryjne we Wrocławiu przy ulicy gen Stefana Grota-Roweckiego 114.

Od 19 października 2016 roku rozpoczął działalność nowy oddział Poznań – Dąbrowa przy ul. Bukowskiej 70.  Od 15 grudnia 2020 roku rozpoczął działalność nowy oddział w Szczecinie przy ulicy Koralowej 105.
Od 4 sierpnia 2021 roku rozpoczął działalność nowy oddział w Łodzi przy ulicy Leszczynowej 4b Posiadamy procedury kontroli jakości wewnątrzlaboratoryjnej oraz bierzemy udział w sprawdzianach hematologicznych i biochemicznych Centralnego Ośrodka Badań Jakości w Diagnostyce Laboratoryjnej (Łódź).

Laboratoriów w całej Polsce

lat doświadczenia

Sprawdź naszą ofertę badań naszego laboratorium weterynaryjnego!

Aktualności

Pakiety badań weterynaryjnych

pakiety weterynaryjne  INFORMACJA Wychodząc na przeciw Państwa oczekiwaniom stworzyliśmy Pakiety Weterynaryjne.Pierwszy z nich to PW1 Pakiet Profilaktyczny w skład którego wchodzą:Profil diagnostyczny rozszerzony: morfologia z rozmazem manualnym, oznaczenia...

czytaj dalej

Badania metodą Real-Time PCR

Badania metodą Real-Time PCR INFORMACJA Informujemy, że od 1 marca 2018 roku wykonujemy w naszym laboratorium weterynaryjnym badania metodą Real-Time PCR. Jednym z wielu zastosowań metody jest szybkie i ilościowe wykrywanie nawet małych ilości patogenu (bakterii,...

czytaj dalej

GRUPY KRWI PSÓW

GRUPY KRWI PSÓWINFORMACJA wg. Manual of canine and feline haematology and transfusion medicine. M. Day et all. BSAVA   Wskazanie do oznaczenia: przetoczenie krwi pełnej przy niedokrwistości, dobór partnerów bez konfliktu serologicznego   Dotychczas...

czytaj dalej

Pobieranie

materiału

Naczelna zasada:
badanie materiału pochodzącego od zwierząt powinno być wykonywane w laboratorium weterynaryjnym ponieważ:

  • Tylko laboratoria weterynaryjne: stosują metody sprawdzone na materiale zwierzęcym.
  • Zatrudniają weterynaryjnych diagnostów laboratoryjnych znających specyfikę materiału pochodzącego od zwierząt, dlatego posiadających wiedzę ułatwiająca wybór 
    najlepszych wskaźników zmian w poszczególnych narządach u różnych gatunków zwierząt.
  • Nasze laboratorium weterynaryjne posiada aparaturę umożliwiającą zmianę zakresu pomiaru w zależności od cech materiału badanego zwierzęcia, a co najważniejsze także wartości referencyjne, uwzględniające rasę i wiek różnych gatunków zwierząt.

Jak prawidłowo pobrać mocz ?

  • Do plastikowego sterylnego pojemnika jednorazowego użytku.
  • W ilości ok. 40 ml umożliwiającej dokładne wykonanie wszystkich oznaczeń.
  • Z pierwszej porannej mikcji, gwarantującej porównanie do wartości referencyjnych.
  • Najlepiej środkowy strumień.

Jak prawidłowo pobrać krew ?

Przygotowanie pacjenta:

  • W dniu poprzedzającym unikać podawania nadmiaru wody i nietypowego pożywienia.
  • Nie pobierać krwi od zwierząt zmęczonych i silnie przestraszonych, ponieważ wynik może być niemiarodajny.
  • Pobierać krew na czczo, minimum 6 godzin od ostatniego karmienia oraz przed podaniem jakichkolwiek leków.
  • Przed badaniem profilu lipidowego zachować stałą dietę przez 2 tyg. oraz odstęp 14 godz. od ostatniego posiłku.
  • Przed badaniem krwi utajonej w kale stosować dietę bezmięsną przez 3 dni.

Krew żylną do badania morfologicznego (minimum 20 ul) należy pobrać:

  • Odrzucając pierwsze krople.
  • Do probówki z EDTA-K2/K3 (fioletowy korek) o pojemności 1 lub 2 ml.
  • Do kreski zaznaczonej przez producenta na probówce, nie więcej – bo powstaną skrzepy oraz nie mniej – bo nadmiar antykoagulantu uszkodzi krwinki.
  • Delikatnie przelewać ze strzykawki do probówki, ponieważ w przeciwnym razie może spowodować to hemolize.
  • Po zakorkowaniu zawartość wymieszać bardzo starannie, ale delikatnie – aby nie spowodować hemolizy.
  • Pozostawić probówkę w niskiej temperaturze pokojowej.
  • Zawiadomić laboratorium weterynaryjne o konieczności odbioru próbki w czasie nie przekraczającym 2 godzin.
  • Próbka transportowana dłużej powinna być przechowywana w lodówce.
  • Do badania morfologicznego można także pobrać krew włośniczkową, ale jest ona bardziej rozrzedzona.

Krew do badania OB:
Przygotowanie pacjenta:

  • Powinna być pobrana do probówki o pojemności 1 lub 2 ml na 3,2% cytrynian sodowy (czarny korek).
  • Dopuszczane jest pobranie do probówki z EDTA-K2/K3 (razem z morfologią).
  • Do badania OB potrzebne jest minimum 1 ml krwi.

Krew do oznaczeń biochemicznych należy pobrać ”na skrzep”:

  • Do czystej, suchej probówki (czerwony korek), nie mieszać oraz ustawić w pionie.
  • Delikatnie przelewać ze strzykawki do probówki, by nie spowodować hemolizy
  • Po powstaniu skrzepu (ok. 15 min.) wstawić do lodówki.
  • Do każdego badania biochemicznego potrzebna jest inna ilość surowicy: od 10 do 50 ul, stąd z 1 ml krwi po uzyskaniu maximum 300 ?
    l surowicy można  wykonać 6 różnych oznaczeń
  • Do badania glukozy krew powinna być pobierana na EDTA-K2 z fluorkiem sodowym (szary korek)
  • Krew ”na skrzep” do oznaczenia stężenia bilirubiny należy chronić przed światłemKrew do niektórych oznaczeń biochemicznych wykonywanych w osoczu wersenianowym należy pobrać tak, jak do badania morfologicznego (EDTA-K2/K3)

Krew do oznaczeń koagulogramu

  • Do probówki z 1,7% cytrynianu sodowego (niebieski korek)
  • Nie stosować opaski uciskowej

Jak prawidłowo pobrać płyn z jamy ciała oraz płyn mózgowo-rdzeniowy ?

  • Jedna probówka: tak jak do badania biochemicznego (”na skrzep”)
  • Zawiadomić laboratorium o konieczności odbioru próbki w czasie nie przekraczającym 2 godzin
  • Próbka transportowana dłużej powinna być przechowywana w temp. +4C.

Jak prawidłowo pobrać wymaz do badania bakteriologicznego?

  • Przed rozpoczęciem antybiotykoterapii lub 7 dni po jej zakończeniu
  • Materiał ze zmian pobrać do wymazówki z podłożem transportowym i przekazać do badania. 

Jak prawidłowo pobrać materiał do badania mykologicznego?

  • Wyrwać kilkanaście włosów wraz z cebulkami z obrzeża zmian i/lub
  • Zeskrobać, np. skalpelem naskórek bez naruszania ciągłości skóry
  • Materiał (wraz ze skalpelem) umieścić w jałowym, zamykanym pojemniku 

Jak prawidłowo pobrać kał do badania parazytologicznego?

  • Kał należy pobrać przed rozpoczęciem leczenia
  • Zebrać z kilku miejsc oddanego kału do sterylnego pojemnika jednorazowego użytku
  • Pobierać trzykrotnie, najlepiej co drugi dzień
  • Próbki przechowywać w lodówce w szczelnym pojemniku 

Jak prawidłowo pobrać materiał do badania histopatologicznego?

  • Ze zmienionych nowotworowo bardzo dużych części tkanki należy pobrać jej niewielkie fragmenty z kilku miejsc, najlepiej z tkanką otaczającą
  • Niewielkie zmienione tkanki należy pobrać w całości wraz z tkanką otaczającą
  • Bardzo małe fragmenty tkanki należy rozłożyć na bibułce i wraz z nią umieścić w formalinie
  • Pobrany materiał umieścić w pojemniku z 4% formaliną (1cz. 37% paraformaldehydu + 9 cz. wody) i pozostawić na maximum 48 godzin w temp. pokojowej. 
    Nie chłodzić!
  • Objętość formaliny powinna być 20-krotnie większa od objętości wycinka
  • Przy podejrzeniu zmian nowotworowych rozpoznawanych metodami immuno-histochemicznymi próbkę w formalinie można przechowywać tylko 24 godziny
  • Materiał z biopsji cienko igłowej należy rozmazać na szkiełku podstawowym, wysuszyć i ew. pokryć preparatem Cytofix, zabezpieczając końce szkiełka przed              sklejeniem przy pomocy plastra. Nie przechowywać!
  • Materiał z biopsji grubo igłowej traktować jak mały fragment tkanki, rozłożyć na bibułce i umieścić w formalinie
  • W razie wątpliwości skontaktować się z laboratorium 

Jak opisać próbkę ?

 Naklejka na pojemniku lub probówce winna zawierać

  • imię i nazwisko właściciela
  • gatunek, rasa, wiek zwierzęciaSkierowanie do laboratorium
  • imię i nazwisko właściciela
  • gatunek, rasa, płeć, kastracja i wiek zwierzęcia
  • data i godzina pobrania materiału
  • pieczątka lecznicy i lekarza
  • informacja o próbce: rodzaj materiału i antykoagulantu
  • zlecenie
  • uwagi: rozpoznanie i informacja o stosowanym leczeniu

Pobierz skierowanie

Laboratorium weterynaryjne Lab-Wet współpracuje z:

Kontakt

Dane do przelewu

WETERYNARYJNE LABORATORIUM DIAGNOSTYCZNE LAB-WET
02-661 WARSZAWA
UL. WITA STWOSZA 30
Numer konta bankowego:
42 1020 1127 0000 1602 0087 1954

6 + 2 =

Warszawa

Laboratorium Weterynaryjne:
ul. Wita Stwosza 30, 02-661 Warszawa

Laboratorium czynne całodobowo

Tel. 22 852-45-25
Fax. 22 852-45-20
Kurier zlecenia: 501-782-940
e-mail: biuro@labwet.pl

Dział wysyłkowy
Tel./Fax
22 852-61-36
e-mail: labwet@labwet.pl

Kraków
ul. Zakopiańska 270
30-435 Kraków

Laboratorium czynne:
Poniedziałek – Piątek  10.00 – 20.00
Sobota 10.00 – 15.00
Niedziela nieczynne

Tel./fax 12 256-32-76
Kurier zlecenia: 501-077-911

e-mail: krakow@labwet.pl

Gdańsk oraz Bydgoszcz i Toruń
ul. Warszawska 40
80-180 Gdańsk

Laboratorium czynne:
Poniedziałek – Piątek  10.00 – 20.00
Sobota 10.00 – 15.00
Niedziela nieczynne

Tel./fax 58 301-90-41
Kurier zlecenia: 501-274-874
e-mail: gdansk@labwet.pl

Szczecin i okolice
ul. Koralowa 105
71-220 Szczecin

Laboratorium czynne:
Poniedziałek – Piątek  10.00 – 20.00
Sobota 10.00 – 15.00
Niedziela nieczynne

Tel./fax 91 817 11 59
Kurier zlecenia: 501 631 408
e-mail: szczecin@labwet.pl

Poznań/Dąbrowa
ul. Bukowska 70
62-070 Dąbrowa

Laboratorium czynne:
Poniedziałek – Piątek  10.00 – 20.00
Sobota 10.00 – 15.00
Niedziela nieczynne

Tel./fax 61-679-22-88
Kurier zlecenia: 503-771-377
e-mail: poznan@labwet.pl

Łódź i okolice
Leszczynowa 4b
91-486 Łódź

Laboratorium czynne:
Poniedziałek – Piątek  10.00 – 20.00
Sobota 10.00 – 15.00
Niedziela nieczynne

Tel./fax 42-616-04-84
Kurier zlecenia: 501-18-2222
e-mail: lodz@labwet.pl


Wrocław
ul. gen. Stefana Grota-Roweckiego 114
52-232 Wrocław

Laboratorium czynne:
Poniedziałek – Piątek  10.00 – 20.00
Sobota 10.00 – 15.00
Niedziela nieczynne

Tel./fax 71-396-94-31
Kurier zlecenia: 502-742-854
e-mail: wroclaw@labwet.pl