Zasady główne

Pobieranie materiału

Dlaczego badania materiału od zwierząt w laboratorium weterynaryjnym?

Naczelna zasada głosi, że badanie materiału pochodzącego od zwierząt powinno być wykonywane w laboratorium weterynaryjnym, ponieważ:

  • Tylko laboratoria weterynaryjne stosują metody sprawdzone na materiale zwierzęcym.
  • Zatrudniają weterynaryjnych diagnostów laboratoryjnych znających specyfikę materiału pochodzącego od zwierząt, dlatego posiadających wiedzę ułatwiająca wybór najlepszych wskaźników zmian w poszczególnych narządach u różnych gatunków zwierząt.
  • Nasze laboratorium weterynaryjne posiada aparaturę umożliwiającą zmianę zakresu pomiaru w zależności od cech materiału badanego zwierzęcia, a co najważniejsze także wartości referencyjne, uwzględniające rasę i wiek różnych gatunków zwierząt.

Two veterinarians taking blood from a Labrador breed dog in the veterinary clinic. health and pet care
sec-title-s-1 FAQ

Pobieranie materiału - pytania i odpowiedzi

Jak prawidłowo pobrać mocz?

Pobieranie próbki moczu:

  • Do plastikowego sterylnego pojemnika jednorazowego użytku.
  • W ilości ok. 40 ml umożliwiającej dokładne wykonanie wszystkich oznaczeń.
  • Z pierwszej porannej mikcji, gwarantującej porównanie do wartości referencyjnych.
  • Najlepiej środkowy strumień.

Jak prawidłowo pobrać krew?

Pobieranie materiału do badań Przygotowanie pacjenta:

  • W dniu poprzedzającym unikać podawania nadmiaru wody i nietypowego pożywienia.
  • Nie pobierać krwi od zwierząt zmęczonych i silnie przestraszonych, ponieważ wynik może być niemiarodajny.
  • Pobierać krew na czczo, minimum 6 godzin od ostatniego karmienia oraz przed podaniem jakichkolwiek leków.
  • Przed badaniem profilu lipidowego zachować stałą dietę przez 2 tyg. oraz odstęp 14 godz. od ostatniego posiłku.
  • Przed badaniem krwi utajonej w kale stosować dietę bezmięsną przez 3 dni.
Krew żylną do badania morfologicznego (minimum 20 ul) należy pobrać:
  • Odrzucając pierwsze krople.
  • Do probówki z EDTA-K2/K3 (fioletowy korek) o pojemności 1 lub 2 ml.
  • Do kreski zaznaczonej przez producenta na probówce, nie więcej – bo powstaną skrzepy oraz nie mniej – bo nadmiar antykoagulantu uszkodzi krwinki.
  • Delikatnie przelewać ze strzykawki do probówki, ponieważ w przeciwnym razie może spowodować to hemolize.
  • Po zakorkowaniu zawartość wymieszać bardzo starannie, ale delikatnie – aby nie spowodować hemolizy.
  • Pozostawić probówkę w niskiej temperaturze pokojowej.
  • Zawiadomić laboratorium weterynaryjne o konieczności odbioru próbki w czasie nie przekraczającym 2 godzin.
  • Próbka transportowana dłużej powinna być przechowywana w lodówce.
  • Do badania morfologicznego można także pobrać krew włośniczkową, ale jest ona bardziej rozrzedzona.
Krew do badania OB:
  • Powinna być pobrana do probówki o pojemności 1 lub 2 ml na 3,2% cytrynian sodowy (czarny korek).
  • Dopuszczane jest pobranie do probówki z EDTA-K2/K3 (razem z morfologią).
  • Do badania OB potrzebne jest minimum 1 ml krwi.
Krew do oznaczeń biochemicznych należy pobrać ”na skrzep”:
  • Do czystej, suchej probówki (czerwony korek), nie mieszać oraz ustawić w pionie.
  • Delikatnie przelewać ze strzykawki do probówki, by nie spowodować hemolizy.
  • Po powstaniu skrzepu (ok. 15 min.) wstawić do lodówki.

Do każdego badania biochemicznego potrzebna jest inna ilość surowicy: od 10 do 50 ul, stąd z 1 ml krwi po uzyskaniu maximum 300 ul surowicy można wykonać 6 różnych oznaczeń.

Krew do badania glukozy:
  • Krew powinna być pobierana na EDTA-K2 z fluorkiem sodowym (szary korek).
Krew do oznaczenia stężenia bilirubiny:
  • Krew ”na skrzep” do oznaczenia stężenia bilirubiny należy chronić przed światłem.
Krew do niektórych oznaczeń biochemicznych wykonywanych w osoczu wersenianowym:
  • Należy pobrać tak, jak do badania morfologicznego (EDTA-K2/K3).
Krew do oznaczeń koagulogramu:
  • Do probówki z 1,7% cytrynianu sodowego (niebieski korek).
  • Nie stosować opaski uciskowej.

Jak prawidłowo pobrać płyn z jamy ciała oraz płyn mózgowo-rdzeniowy?

Przygotowanie i pobranie próbki:

  • Jedna probówka: tak jak do badania biochemicznego (”na skrzep”)
  • Zawiadomić laboratorium o konieczności odbioru próbki w czasie nie przekraczającym 2 godzin.
  • Próbka transportowana dłużej powinna być przechowywana w temp. +4C.

Jak prawidłowo pobrać wymaz do badania bakteriologicznego?

Pobieranie materiału do badań mikrobiologicznych/mykologicznych:

  • Przed rozpoczęciem antybiotykoterapii lub 7 dni po jej zakończeniu.
  • Materiał ze zmian pobrać do wymazówki z podłożem transportowym i przekazać do badania.

Jak prawidłowo pobrać materiał do badania mykologicznego?

Pobieranie materiału (włosy, zeskrobiny skóry):

  • Wyrwać kilkanaście włosów wraz z cebulkami z obrzeża zmian i/lub
  • Zeskrobać, np. skalpelem naskórek bez naruszania ciągłości skóry.
  • Materiał (wraz ze skalpelem) umieścić w jałowym, zamykanym pojemniku.

Jak prawidłowo pobrać kał do badania parazytologicznego?

Pobieranie próbki kału:

  • Kał należy pobrać przed rozpoczęciem leczenia.
  • Zebrać z kilku miejsc oddanego kału do sterylnego pojemnika jednorazowego użytku.
  • Pobierać trzykrotnie, najlepiej co drugi dzień.
  • Próbki przechowywać w lodówce w szczelnym pojemniku.

Jak prawidłowo pobrać materiał do badania histopatologicznego?

Pobieranie materiału do badań patomorfologicznych (histopatologia, cytologia):

  • Ze zmienionych nowotworowo bardzo dużych części tkanki należy pobrać jej niewielkie fragmenty z kilku miejsc, najlepiej z tkanką otaczającą.
  • Niewielkie zmienione tkanki należy pobrać w całości wraz z tkanką otaczającą.
  • Bardzo małe fragmenty tkanki należy rozłożyć na bibułce i wraz z nią umieścić w formalinie.
  • Pobrany materiał umieścić w pojemniku z 4% formaliną (1cz. 37% paraformaldehydu + 9 cz. wody) i pozostawić na maximum 48 godzin w temp. pokojowej. **Nie chłodzić!**
  • Objętość formaliny powinna być 20-krotnie większa od objętości wycinka.
  • Przy podejrzeniu zmian nowotworowych rozpoznawanych metodami immuno-histochemicznymi próbkę w formalinie można przechowywać tylko 24 godziny.
  • Materiał z biopsji cienko igłowej należy rozmazać na szkiełku podstawowym, wysuszyć i ew. pokryć preparatem Cytofix, zabezpieczając końce szkiełka przed sklejeniem przy pomocy plastra. **Nie przechowywać!**
  • Materiał z biopsji grubo igłowej traktować jak mały fragment tkanki, rozłożyć na bibułce i umieścić w formalinie.
  • W razie wątpliwości skontaktować się z laboratorium.

Jak opisać próbkę ?

Identyfikacja próbek i wypełnianie skierowania Naklejka na pojemniku lub probówce winna zawierać:

  • imię i nazwisko właściciela
  • gatunek, rasa, wiek zwierzęcia
Skierowanie do laboratorium powinno zawierać:
  • imię i nazwisko właściciela
  • gatunek, rasa, płeć, kastracja i wiek zwierzęcia
  • data i godzina pobrania materiału
  • pieczątka lecznicy i lekarza
  • informacja o próbce: rodzaj materiału i antykoagulantu
  • zlecenie
  • uwagi: rozpoznanie i informacja o stosowanym leczeniu

Masz pytania dotyczące badań lub próbek?

Uzyskaj odpowiedź

e-mail: labwet@labwet.pl

Wolisz porozmawiać ze specjalistą?

Zadzwoń teraz

22 852-61-36

© Copyright LAB-WET WETERYNARYJNE LABORATORIUM DIAGNOSTYCZNE S.C.
Realizacja: Collytics

Warszawa

ul. Wita Stwosza 30
02-661 Warszawa
tel. (22) 852 45 25
Kurier: 501-782-940

Uwaga! Laboratorium w Warszawie czynne 24h

Kraków

ul. Zakopiańska 270
30-435 Kraków
tel. (12) 256 32 76
Kurier: 501-077-911

Gdańsk

ul. Elbląska 117
80-718 Gdańsk
tel. (58) 301 90 41
Kurier: 501-274-874

Poznań

ul. Bukowska 70
62-070 Dąbrowa
tel. (61) 679 22 88
Kurier: 503-771-377

Wrocław

*Obsługiwany przez Poznań*

ul. Bukowska 70
62-070 Dąbrowa
tel. (71) 396 94 31
Kurier: 502-742-854

Szczecin

ul. Gęsia 6A
71-693 Szczecin
tel. (91) 817 11 59
Kurier: 501-631-408

Łódź

ul. Leszczynowa 4b
91-486 Łódź
tel. (42) 616 04 84
Kurier: 501-18-2222